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橡胶树幼苗铜胁迫症状及其吸收转运特性分析

尤洁 付瑛格 王纪坤 刘婉婷 刘子凡 安锋

尤洁, 付瑛格, 王纪坤, 等. 橡胶树幼苗铜胁迫症状及其吸收转运特性分析[J]. 热带生物学报(中英文), 2026, 17(0): 1−10. doi:  10.15886/j.cnki.rdswxb.20250124
引用本文: 尤洁, 付瑛格, 王纪坤, 等. 橡胶树幼苗铜胁迫症状及其吸收转运特性分析[J]. 热带生物学报(中英文), 2026, 17(0): 1−10. doi:  10.15886/j.cnki.rdswxb.20250124
You Jie, Fu Yingge, Wang Jikun, Liu Wangting, Liu Zifan, An Feng. Copper stress symptoms and absorption-transport characteristics analysis in rubber tree plants[J]. Journal of Tropical Biology. doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.20250124
Citation: You Jie, Fu Yingge, Wang Jikun, Liu Wangting, Liu Zifan, An Feng. Copper stress symptoms and absorption-transport characteristics analysis in rubber tree plants[J]. Journal of Tropical Biology. doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.20250124

橡胶树幼苗铜胁迫症状及其吸收转运特性分析

DOI: 10.15886/j.cnki.rdswxb.20250124 CSTR: 32425.14.j.cnki.rdswxb.20250124
基金项目: 国家天然橡胶产业技术体系项目(CARS33-ZP1),国家自然科学基金面上项目(31670633)
详细信息
    第一作者:

    尤洁(1999—),女,海南大学热带农林学院2023级硕士研究生。E-mail:yj3220296726@163.com

    通信作者:

    刘子凡(1975—),男,教授。研究方向:热带作物高效栽培。E-mail:jiangxilaobiao@163.com

    安锋(1977—),男,研究员。研究方向:作物栽培与生理生态。E-mail:an-f@163.com

  • 中图分类号: S794.1

Copper stress symptoms and absorption-transport characteristics analysis in rubber tree plants

  • 摘要: 探究不同质量浓度铜(Cu)胁迫及随时间延长对橡胶树(Hevea brasiliensis)幼苗根系和叶片铜胁迫症状以及铜积累动态的影响,揭示胁迫的时序性效应,为阐明橡胶树对铜的耐受性及机制提供依据。采用水培试验,以橡胶树73397组培苗为材料,设置0.1(对照)、0、6、12、24 mg·L−1 Cu2+(以CuSO4·5H2O形式添加)5个处理水平,于胁迫后第3、6、9、12 d取样。测定指标包括:(1)表型变化:定期观察并记录根系和叶片的变化;(2)铜含量:采用原子吸收光谱法(AAS)测定不同胁迫时间点下根、叶片、树皮、木质部的铜积累量。研究结果表明,铜在橡胶树幼苗体内的积累是一个浓度与时间依赖过程,橡胶苗各组织铜含量随胁迫浓度与时间的增加而持续上升。铜缺乏(0 mg·L−1)引发叶片黄化、叶尖干枯和根系褐变,缺铜条件下根部与树皮中的铜含量在胁迫后期出现下降,叶片中铜含量也明显降低,木质部中铜含量未发生显著变化。铜过量处理中,6 mg·L−1下橡胶苗遭受胁迫程度较轻,没有危害橡胶苗的整体生存;12、24 mg·L−1导致根系由褐变至黑变腐烂,叶片出现锈斑,根部首先积累大量铜,起初步解毒作用后,根系固持机制失效,铜大量向上运输并积累于叶片,致使叶片铜含量在胁迫后期急剧升高。缺铜(0 mg·L−1)诱发典型缺素症状(叶片黄化、根系褐变),短期缺铜抑制了铜向地上部的转运,以维持根系基本功能后向地上部转运满足代谢需求而增强铜吸收与转运的长期补偿机制;在过量铜胁迫下,铜质量浓度6 mg·L−1橡胶苗产生毒害反应,激活保护机制,0.1~6 mg·L−1为本次试验条件下橡胶树幼苗的铜耐受浓度范围;高质量浓度铜处理(12、24 mg·L−1)则导致铜在根部大量积累后向地上部转运,最终在叶片中显著积累,引发毒害症状(根系黑变、叶片锈斑)甚至死亡。
  • 图  2  不同铜处理浓度下橡胶苗叶片生长的差异

    注:图中红色框区橡胶苗在缺铜和受到铜害情况下叶片出现典型胁迫症状,包括黄化、叶尖干枯以及锈褐色坏死斑块。

    Fig.  2  Change in leaf growth performance of rubber tree plants under treatment at different copper concentrations.

    Note: The rubber tree plants in the red box exhibit typical stress symptoms under both copper deficiency and copper toxicity, including leaf chlorosis, leaf tip desiccation, and rust-brown necrotic patches.

    图  3  不同铜水平下橡胶苗游离脯氨酸含量差异

    Fig.  3  Differences in free proline content among rubber seedlings under varying copper levels

    图  4  不同铜处理下橡胶苗各组织铜含量的变化

    Fig.  4  Changes in copper content among various tissues of rubber tree plants under different copper treatments.

    图  5  不同铜处理浓度下橡胶苗铜转运系数的变化

    Fig.  5  Comparison of copper translocation factor in rubber tree plants under treatment at different copper concentrations.

    表  1  试验处理

    Table  1  Experiment

    处理
    Treatment
    pHCuSO4·5H2O质量浓度
    ρ(CuSO4·5H2O)/(mg·L−1
    CK5.50.1
    T17.00.1
    T25.50
    T35.56
    T45.512
    T55.524
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  • [1] Yruela I. Copper in plants: acquisition, transport and interactions [J]. Functional Plant Biology, 2009, 36(5): 409−430. https://doi.org/10.1071/fp08288 doi:  10.1071/fp08288
    [2] Ravet K, Pilon M. Copper and iron homeostasis in plants: the challenges of oxidative stress [J]. Antioxidants & Redox Signaling, 2013, 19(9): 919−932. https://doi.org/10.1089/ars.2012.5084 doi:  10.1089/ars.2012.5084
    [3] Rai S, Singh P K, Mankotia S, et al. Iron homeostasis in plants and its crosstalk with copper, zinc, and manganese [J]. Plant Stress, 2021, 1: 100008. https://doi.org/10.1016/j.stress.2021.100008 doi:  10.1016/j.stress.2021.100008
    [4] Marschner P. Marschner’s mineral nutrition of higher plants [M]. 3rd ed. London: Elsevier/Academic Press, 2012: 651. doi: 10.1016/C2009-0-63043-9
    [5] Sancenón V, Puig S, Mateu-Andrés I, et al. The Arabidopsis copper transporter COPT1 functions in root elongation and pollen development [J]. Journal of Biological Chemistry, 2004, 279(15): 15348−15355. https://doi.org/10.1074/jbc.M313321200 doi:  10.1074/jbc.M313321200
    [6] Lequeux H, Hermans C, Lutts S, et al. Response to copper excess in Arabidopsis thaliana: impact on the root system architecture, hormone distribution, lignin accumulation and mineral profile [J]. Plant Physiology and Biochemistry, 2010, 48(8): 673−682. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2010.05.005 doi:  10.1016/j.plaphy.2010.05.005
    [7] Adrees M, Ali S, Rizwan M, et al. The effect of excess copper on growth and physiology of important food crops: a review [J]. Environmental Science and Pollution Research, 2015, 22(11): 8148−8162. https://doi.org/10.1007/s11356-015-4496-5 doi:  10.1007/s11356-015-4496-5
    [8] Cobbett C, Goldsbrough P. Phytochelatins and metallothioneins: roles in heavy metal detoxification and homeostasis [J]. Annual Review of Plant Biology, 2002, 53: 159−182. https://doi.org/10.1146/annurev.arplant.53.100301.135154 doi:  10.1146/annurev.arplant.53.100301.135154
    [9] Peñarrubia L, Andrés-Colás N, Moreno J, et al. Regulation of copper transport in Arabidopsis thaliana: a biochemical oscillator? [J]. JBIC Journal of Biological Inorganic Chemistry, 2010, 15(1): 29−36. https://doi.org/10.1007/s00775-009-0591-8 doi:  10.1007/s00775-009-0591-8
    [10] Deng F L, Yamaji N, Xia J X, et al. A member of the heavy metal P-type ATPase OsHMA5 is involved in xylem loading of copper in rice [J]. Plant Physiology, 2013, 163(3): 1353−1362. https://doi.org/10.1104/pp.113.226225 doi:  10.1104/pp.113.226225
    [11] Carrió-Seguí À, Romero P, Curie C, et al. Copper transporter COPT5 participates in the crosstalk between vacuolar copper and iron pools mobilisation [J]. Scientific Reports, 2019, 9(1): 4648. https://doi.org/10.1038/s41598-018-38005-4 doi:  10.1038/s41598-018-38005-4
    [12] Thounaojam T C, Panda P, Mazumdar P, et al. Excess copper induced oxidative stress and response of antioxidants in rice [J]. Plant Physiology and Biochemistry, 2012, 53: 33−39. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2012.01.006 doi:  10.1016/j.plaphy.2012.01.006
    [13] 谢晓霄, 徐劼, 方学雷, 等. 铜胁迫下吊兰的生理响应及对铜的吸收特性[J]. 广州化工, 2023, 51(10): 41−43. https://doi.org/10.3969/j.issn.1001-9677.2023.10.014 doi:  10.3969/j.issn.1001-9677.2023.10.014
    [14] Sposito G. The chemistry of soils [M]. 2nd ed. Oxford: Oxford University Press, 2008: 329.
    [15] 李明谦, 张凤良, 李小琴, 等. 橡胶树无性系苗期生长和光合生理特性的比较[J]. 西南林业大学学报(自然科学), 2020, 40(2): 18−22. https://doi.org/10.11929/j.swfu.201905032 doi:  10.11929/j.swfu.201905032
    [16] 贝美容, 蔡隽, 戚春林, 等. 2种新型种植材料(苗木)橡胶幼树的施肥效应[J]. 热带作物学报, 2019, 40(11): 2105−2111. https://doi.org/10.3969/j.issn.1000-2561.2019.11.002 doi:  10.3969/j.issn.1000-2561.2019.11.002
    [17] 张婷婷, 刘子凡, 安锋, 等. 铝胁迫造成橡胶苗死亡的机制研究[J]. 热带作物学报, 2020, 41(12): 2439−2445. https://doi.org/10.3969/j.issn.1000-2561.2020.12.010 doi:  10.3969/j.issn.1000-2561.2020.12.010
    [18] Bolan N S, Adriano D C, Curtin D. Soil acidification and liming interactions with nutrientand heavy metal transformationand bioavailability [J]. Advances in Agronomy, 2003, 78: 215−272. https://doi.org/10.1016/s0065-2113(02)78006-1 doi:  10.1016/s0065-2113(02)78006-1
    [19] Liu C A, Liang M Y, Nie Y, et al. The conversion of tropical forests to rubber plantations accelerates soil acidification and changes the distribution of soil metal ions in topsoil layers [J]. Science of the Total Environment, 2019, 696: 134082. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2019.134082 doi:  10.1016/j.scitotenv.2019.134082
    [20] 覃怀德, 高乐, 吴炳孙, 等. 橡胶树割面涂施硫酸铜对胶乳生理特性影响的初步分析[J]. 热带农业科学, 2013, 33(6): 1−4. https://doi.org/10.3969/j.issn.1009-2196.2013.06.001 doi:  10.3969/j.issn.1009-2196.2013.06.001
    [21] 肖再云, 校现周. 橡胶树胶乳铜离子含量与乙烯刺激强度的关系初探[J]. 热带农业科技, 2010, 33(3): 10−12. https://doi.org/10.3969/j.issn.1672-450X.2010.03.003 doi:  10.3969/j.issn.1672-450X.2010.03.003
    [22] Hoagland D R, Arnon D I. The water-culture method for growing plants without soil [M]. Berkeley: The College of Agriculture, University of California, 1950: 32.
    [23] 韩志平, 张海霞, 赵智灵, 等. 铜胁迫对小白菜幼苗生长的影响[J]. 长江蔬菜, 2015(12): 28−32. https://doi.org/10.3865/j.issn.1001-3547.2015.12.010 doi:  10.3865/j.issn.1001-3547.2015.12.010
    [24] 陆奇杰, 巢建国, 谷巍, 等. 铜胁迫对茅苍术光合特性及生理指标的影响[J]. 中药材, 2018, 41(7): 1534−1538. https://doi.org/10.13863/j.issn1001-4454.2018.07.004 doi:  10.13863/j.issn1001-4454.2018.07.004
    [25] 张筱, 张海芹, 高宇琪, 等. 不同地被覆盖物对干旱胁迫下银杏生长及抗旱性的影响[J]. 贵州农业科学, 2025, 53(12): 135−144. https://doi.org/10.3969/j.issn.1001-3601.2025.12.015 doi:  10.3969/j.issn.1001-3601.2025.12.015
    [26] 李辉容, 唐天君, 杨文亮. 火焰原子吸收光谱法测定铜锤草中锰铁铜锌[J]. 食品与发酵科技, 2013, 49(3): 72−73. https://doi.org/10.3969/j.issn.1674-506X.2013.03-020 doi:  10.3969/j.issn.1674-506X.2013.03-020
    [27] 郭英. 火焰原子吸收分光光度法测定地表水中的铜、锌、铅、镉[J]. 环境科学导刊, 2017, 36(3): 106−108. https://doi.org/10.13623/j.cnki.hkdk.2017.03.022 doi:  10.13623/j.cnki.hkdk.2017.03.022
    [28] 张艳, 李勋, 彭彬, 等. 雅砻江上游甘孜段历史遗留矿山乡土植物重金属富集能力比较[J]. 应用与环境生物学报, 2023, 29(6): 1373−1380. https://doi.org/10.19675/j.cnki.1006-687x.2022.10006 doi:  10.19675/j.cnki.1006-687x.2022.10006
    [29] 孟桂元, 蒋文杰, 韩杰铖, 等. 锑胁迫对苎麻生长及锑富集转运的影响[J]. 生态学杂志, 2026, 45(5): 1577−1585. https://doi.org/10.13292/j.1000-4890.202605.015 doi:  10.13292/j.1000-4890.202605.015
    [30] Yamasaki H, Hayashi M, Fukazawa M, et al. SQUAMOSA promoter binding Protein-Like7 is a central regulator for copper homeostasis in Arabidopsis [J]. The Plant Cell, 2009, 21(1): 347−361. https://doi.org/10.1105/tpc.108.060137 doi:  10.1105/tpc.108.060137
    [31] Hayat S, Hayat Q, Alyemeni M N, et al. Role of proline under changing environments: a review [J]. Plant Signaling & Behavior, 2012, 7(11): 1456−1466. https://doi.org/10.4161/psb.21949 doi:  10.4161/psb.21949
    [32] Szabados L, Savouré A. Proline: a multifunctional amino acid [J]. Trends in Plant Science, 2010, 15(2): 89−97. https://doi.org/10.1016/j.tplants.2009.11.009 doi:  10.1016/j.tplants.2009.11.009
    [33] Dar M I, Naikoo M I, Rehman F, et al. Proline accumulation in plants: roles in stress tolerance and plant development[M]//Iqbal N, Nazar R, Khan N A. Osmolytes and plants acclimation to changing environment: emerging omics technologies. New Delhi: Springer, 2016: 155−166. https://doi.org/10.1007/978-81-322-2616-1_9
    [34] Sancenón V, Puig S, Mira H, et al. Identification of a copper transporter family in Arabidopsis thaliana [J]. Plant Molecular Biology, 2003, 51(4): 577−587. https://doi.org/10.1023/A:1022345507112 doi:  10.1023/A:1022345507112
  • [1] 王浩, 魏军亚, 刘德兵.  盐胁迫对海南矮蕉幼苗生理的影响 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.20260049
    [2] 张倩玉, 袁红梅.  橡胶树HbCCoAOMT家族基因的鉴定 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.20240093
    [3] 徐春华, 李超萍, 时涛, 王国芬, 蔡吉苗, 李博勋, 黄贵修.  木薯细菌性萎蔫病菌2个候选抗铜基因簇的克隆和分析 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.20220009
    [4] 宋波, 董豪, 全飞, 符庆茂, 杨川, 杨思琪, 谭正洪, 吴志祥.  橡胶树干CO2释放速率垂直变化及其与树干液流和木质部结构间的关系 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2022.01.001
    [5] 祁栋灵, 吴志祥, 兰国玉, 孙瑞, 陈帮乾, 杨川, 陶忠良.  橡胶树寒害减灾技术研究 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2022.01.004
    [6] 童俊儒, 安锋, 谢贵水.  基于CROPWAT模型的橡胶树需水量 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2022.01.008
    [7] 林春花, 张宇, 刘文波, 李潇, 缪卫国.  我国巴西橡胶树炭疽病的研究进展 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2021.03.018
    [8] 陈帅, 裴跃斌, 王康欣, 周海龙, 李元超.  苯并[a]芘胁迫对3种石珊瑚虫黄藻密度及叶绿素a含量的影响 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2021.02.002
    [9] 王龙仁, 曾军, 刘双龙, 王雅丽, 孙会举, 王熙, 杨福孙, 戴好富.  白木香人工结香初期营养元素及叶片叶绿素含量的变化 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2021.03.008
    [10] 叶鸿鹰, 梅双双, 戎伟.  ATAF2正调控拟南芥对橡胶树白粉菌的抗病性 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2020.01.009
    [11] 卓文, 陈新, 刘秋妤, 唐敏.  铜离子胁迫对近江牡蛎软体组织及贝壳重金属含量的影响 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2019.01.001
    [12] 林贤桂, 翟金玲, 黄惜.  巴西橡胶树HbMYBs转录因子的克隆及表达分析 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2018.01.002
    [13] 刘秋妤, 陈新, 覃宗敏, 卓文, 唐敏.  铜离子对锦鲤DNA的损伤 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2018.04.004
    [14] 何丽平, 吴友根, 张军锋, 胡新文.  连作广藿香挥发油及百秋李醇含量的变化 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2017.02.007
    [15] 张锐, 周晓超, 苏阳, 周开兵.  三月红荔枝果皮钾钙镁含量变化与着色的关系 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2016.01.009
    [16] 宋芹芹, 李玉虎, 周海龙.  凡纳滨对虾应答低氧-复氧胁迫免疫相关酶活力的时空变化 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2015.04.001
    [17] 黄旭, 王安邦, 苗红霞, 刘菊华, 贾彩红, 金志强, 徐碧玉.  香蕉辐射诱变抗寒株系果实中淀粉和糖含量的变化 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2015.03.008
    [18] 徐静文, 廉文君, 曹玉鑫, 夏志辉, 黄惜.  巴西橡胶树树皮环氧树脂组织切片及染色技术 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2014.02.014
    [19] 刘维俊, 徐立新, 何美丹, 温泽泽, 张珈宁, 袁潜华.  干旱胁迫下山栏稻与栽培水稻品种苗期表型性状及生理差异 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2014.03.010
    [20] 李四有, 邱学俊.  丙环唑防治橡胶树红根病田间试验 . 热带生物学报(中英文), doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.2012.04.002
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    • 收稿日期:  2025-12-01
    • 录用日期:  2026-01-31
    • 修回日期:  2026-01-26

    橡胶树幼苗铜胁迫症状及其吸收转运特性分析

    DOI: 10.15886/j.cnki.rdswxb.20250124
      基金项目:  国家天然橡胶产业技术体系项目(CARS33-ZP1),国家自然科学基金面上项目(31670633)
      作者简介:

      尤洁(1999—),女,海南大学热带农林学院2023级硕士研究生。E-mail:yj3220296726@163.com

      通讯作者: 刘子凡(1975—),男,教授。研究方向:热带作物高效栽培。E-mail:jiangxilaobiao@163.com安锋(1977—),男,研究员。研究方向:作物栽培与生理生态。E-mail:an-f@163.com
    • 中图分类号: S794.1

    摘要: 探究不同质量浓度铜(Cu)胁迫及随时间延长对橡胶树(Hevea brasiliensis)幼苗根系和叶片铜胁迫症状以及铜积累动态的影响,揭示胁迫的时序性效应,为阐明橡胶树对铜的耐受性及机制提供依据。采用水培试验,以橡胶树73397组培苗为材料,设置0.1(对照)、0、6、12、24 mg·L−1 Cu2+(以CuSO4·5H2O形式添加)5个处理水平,于胁迫后第3、6、9、12 d取样。测定指标包括:(1)表型变化:定期观察并记录根系和叶片的变化;(2)铜含量:采用原子吸收光谱法(AAS)测定不同胁迫时间点下根、叶片、树皮、木质部的铜积累量。研究结果表明,铜在橡胶树幼苗体内的积累是一个浓度与时间依赖过程,橡胶苗各组织铜含量随胁迫浓度与时间的增加而持续上升。铜缺乏(0 mg·L−1)引发叶片黄化、叶尖干枯和根系褐变,缺铜条件下根部与树皮中的铜含量在胁迫后期出现下降,叶片中铜含量也明显降低,木质部中铜含量未发生显著变化。铜过量处理中,6 mg·L−1下橡胶苗遭受胁迫程度较轻,没有危害橡胶苗的整体生存;12、24 mg·L−1导致根系由褐变至黑变腐烂,叶片出现锈斑,根部首先积累大量铜,起初步解毒作用后,根系固持机制失效,铜大量向上运输并积累于叶片,致使叶片铜含量在胁迫后期急剧升高。缺铜(0 mg·L−1)诱发典型缺素症状(叶片黄化、根系褐变),短期缺铜抑制了铜向地上部的转运,以维持根系基本功能后向地上部转运满足代谢需求而增强铜吸收与转运的长期补偿机制;在过量铜胁迫下,铜质量浓度6 mg·L−1橡胶苗产生毒害反应,激活保护机制,0.1~6 mg·L−1为本次试验条件下橡胶树幼苗的铜耐受浓度范围;高质量浓度铜处理(12、24 mg·L−1)则导致铜在根部大量积累后向地上部转运,最终在叶片中显著积累,引发毒害症状(根系黑变、叶片锈斑)甚至死亡。

    English Abstract

    尤洁, 付瑛格, 王纪坤, 等. 橡胶树幼苗铜胁迫症状及其吸收转运特性分析[J]. 热带生物学报(中英文), 2026, 17(0): 1−10. doi:  10.15886/j.cnki.rdswxb.20250124
    引用本文: 尤洁, 付瑛格, 王纪坤, 等. 橡胶树幼苗铜胁迫症状及其吸收转运特性分析[J]. 热带生物学报(中英文), 2026, 17(0): 1−10. doi:  10.15886/j.cnki.rdswxb.20250124
    You Jie, Fu Yingge, Wang Jikun, Liu Wangting, Liu Zifan, An Feng. Copper stress symptoms and absorption-transport characteristics analysis in rubber tree plants[J]. Journal of Tropical Biology. doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.20250124
    Citation: You Jie, Fu Yingge, Wang Jikun, Liu Wangting, Liu Zifan, An Feng. Copper stress symptoms and absorption-transport characteristics analysis in rubber tree plants[J]. Journal of Tropical Biology. doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.20250124
    • 铜(Cu)是植物必需的微量营养元素,在植物体内具有多重生理功能[1]。作为氧化还原活性金属,铜在植物体内充当多种关键酶的结构组分,包括细胞色素氧化酶(cytochrome c oxidase,COX)、铜锌超氧化物歧化酶(Cu/Zn-superoxide dismutase,Cu/Zn-SOD)、多酚氧化酶(polyphenol oxidase,PPO)以及质体蓝素(plastocyanin,PC)等,这些酶广泛参与光合电子传递链、呼吸代谢、木质素生物合成及氧化应激防御等重要生理过程,与植物生长与物质代谢密切相关[1-2]。铜缺乏或过量都会对植物造成严重影响[3],缺铜会导致植物根系变短、增粗,侧根形成减少,通常伴随着颜色的加深(褐变),新叶发黄,凋萎干枯,叶尖卷曲发白,有坏死斑点[1, 4];过量的铜会产生极大的毒性,导致植物出现黄化、坏死、生长受阻以及根茎生长受抑制等症状[1]。为了应对铜胁迫,植物演化出一系列的适应策略。比如,在铜缺乏条件下,植物通常通过增加根系表面积(促进侧根发生)和上调高亲和力转运体表达来增强吸收[5];而铜过量时,根系生长则会受到受抑且铜主要积累于根部以限制向地上部转运[6]。在生理和分子层面,包括激活抗氧化酶系统以清除过量活性氧[27]、合成金属螯合分子以降低游离铜的毒性[8]、调控铜转运蛋白(如COPT和HMA家族)以维持细胞内铜稳态和区隔化(如液泡储存)维持体内铜稳态植物等[9-11]。不同植物对铜胁迫的耐受能力存在显著差异,例如,水稻(Oryza sativa)在水培体系中,当Cu2+质量浓度≥0.5 μmol·L−1时即表现出生长抑制,5 μmol·L−1时生物量显著下降[12];吊兰(Chlorophytum comosum)在短期内低质量浓度Cu2+胁迫(15 mg·L−1)下光合过程存在促进作用,高质量浓度Cu2+胁迫(30 mg·L−1和60 mg·L−1)存在明显抑制作用[13]。铜(Cu2+)等可变价金属的溶解度高度依赖于pH和氧化还原电位,在酸性pH条件下,Cu2+是稳定的可溶性形态;随着pH升高,会逐步形成Cu(OH)2、CuCO3、Cu2(OH)2CO3等沉淀,溶解度急剧下降,生物有效性也因此降低[14]

      橡胶树(Hevea brasiliensis)原产于巴西亚马逊河流域[15],是目前唯一大面积商业化种植生产天然橡胶的树种,在中国主要种植于云南、广东以及海南[16],该区普遍为酸性土壤[17]。近年来,随着全球气候变化的加剧和化学肥料的大量使用,土壤酸化日趋严重[18]。刘长安等[19]通过对热带雨林以及由其垦殖而来的不同年龄的橡胶林进行研究发现,热带雨林垦殖为橡胶林,加剧了土壤酸化和盐基流失的进程,提高了有效铜的含量,有效铜主要受土壤酸化进程的影响,在雨季和旱季,土壤酸碱度分别降低了13.4%和9.9%,土壤有效铜的平均值分别增加了82.7%和65.8%。覃怀德等[20]研究表明,对割面涂施硫酸铜对干胶含量、无机磷含量无明显影响,但能够在一定程度上提高胶乳的蔗糖含量、硫醇含量和蔗糖转化酶活性,降低镁离子含量和黄色体破裂指数,提高橡胶树的干胶产量,在橡胶树茎干上钻孔注入大于1000 mg·L−1的硫酸铜可以刺激并增加胶乳产量,但割面涂施少量的硫酸铜并不能产生明显的增产效果;肖再云等[21]的研究发现,在一定乙烯刺激范围内,乙烯浓度与胶乳中的铜离子含量成正比,而橡胶树胶乳中铜离子的含量对其加工性能、老化稳定性等具有一定的影响。可见,以往研究多关注施用硫酸铜对橡胶树胶乳产量和胶乳生理参数的影响,而关于橡胶树对铜胁迫的生理响应,尤其是其幼苗阶段的耐受阈值、体内铜的吸收积累动态及跨器官转运规律等基础科学问题,仍缺乏系统研究。因此,本研究以橡胶树幼苗为对象,设置不同质量浓度铜处理,结合叶片、根系表型症状与游离脯氨酸含量的变化及各组织铜含量分析,重点解析铜在橡胶树各器官中的吸收积累与分配模式,以及橡胶树幼苗铜毒害耐受浓度,为橡胶树栽培中的铜营养调控提供理论依据。

      • 采用3蓬叶、顶蓬叶稳定、生长均一的‘热研73397’橡胶树组培幼苗,移栽至Hoagland营养液中进行水培预培养一个月(条件详见1.1.2),之后用于正式胁迫试验。

      • 采用水培法,将生长一致的组培苗移栽至容积为5 L的深色塑料桶中,以Hoagland营养液为培养介质,营养液pH值调节至5.5,在培养房进行水培预培养1个月,培养条件设定为:温度25 °C,光周期16 h光照: 8 h黑暗,并使用增氧泵持续向营养液通气,以保证根系氧气供应。对恢复生长后的橡胶苗分别进行铜胁迫处理,以Hoagland全营养液为对照,胁迫培养营养液中的Cu2+(以CuSO4·5H2O供给)质量浓度和pH值如表1所示(选择pH5.5和7.0作为对照条件主要是排除pH波动对实验结果的影响,对照组铜质量浓度设置为0.1 mg·L−1,此为Hoagland营养液的标准配方浓度[22],经已发表的报道和前期预实验证实,此浓度在研究期间并未对橡胶苗生长造成明显抑制作用,故将其设为对照[23-24];此外,预实验阶段曾在0.1~6 mg·L−1中设置3 mg·L−1,通过测定相关生长生理指标和表型观察,发现橡胶苗未表现出明显缺铜或铜害症状,无法体现浓度梯度对橡胶苗生长的渐进式影响,未达到预期实验目的,为突出铜胁迫的浓度效应,避免无效梯度对实验结果的干扰,经综合评估后删除,形成重点突出的浓度梯度),胁迫处理3、6、9、12 d每个时间间隔结束时进行叶片与根系的观察与测定各根部、叶片、树皮以及木质部的铜含量,每个处理浓度16株橡胶苗,共计96株。

        表 1  试验处理

        Table 1.  Experiment

        处理
        Treatment
        pHCuSO4·5H2O质量浓度
        ρ(CuSO4·5H2O)/(mg·L−1
        CK5.50.1
        T17.00.1
        T25.50
        T35.56
        T45.512
        T55.524
      • 采用酸性茚三酮染色法测定[25]

      • 将采集的样品(橡胶苗各组织)用自来水、二次蒸馏水淋洗干净,阴干后于电热恒温干燥箱60℃烘干,粉碎后过100目筛,装入干燥样品袋内放在干燥器中备用。分别称取其根、叶、木质部及树皮各1 g于烧杯中,加浓硝酸-高氯酸(3+1)的混合酸15 mL,盖上表面皿,消化24 h后进行低温消解,待白烟冒尽,液体成淡黄色或白色沉渣析出,残渣用二次蒸馏水溶解,定容至25 mL,过滤后待测,同时做试剂空白,根据火焰原子吸收光谱仪的说明及实验选择324.75 nm测定,并且吸取铜的储备液,按比例稀释0、0.25、0.5、1、1.5、2、2.5、5 ppm成标准溶液,分别测定吸光值[26-27],计算出橡胶苗各器官溶液与空白溶液中铜的质量浓度。具体橡胶苗各器官铜含量计算公式为

        $$ X=\frac{(\rho -\rho 0)×V×f}{m\text{×F}} $$ (1)

        式(1)中:X——试样中铜的含量;

        ρ——试样溶液中铜的质量浓度;

        ρ0——试样空白液中铜的质量浓度;

        V——试样消解液的定容体积;

        f——试样稀释倍数;

        m——试样称取质量或吸取体积;

        F——换算系数。

      • 铜转运系数(translocation factor,TF),可反映植物吸收重金属后从根部转移到地上部的能力,具体计算公式如下[28-29]

        $$\begin{split} &\text{TF =}\frac{\text{地上部总铜含量}}{\text{根部总铜含量}}=\\&\frac{(Cstem \times DWstem)+(Cleaf\times DWleaf)}{Croot\times DWroot} \end{split} $$ (2)

        式(2)中:TF——铜转运系数;

        Cstem——茎的铜含量;

        Dwstem——茎的干重;

        Cleaf——叶片的铜含量;

        DWleaf——叶片的干重;

        Croot——根部的铜含量;

        DWroot——根部的干重。

      • 使用Microsoft Excel 2019录入和整理原始数据,初步计算各处理组的平均值(Mean)和标准差(Standard Deviation,SD),采用SPSS Statistics 17.0软件进行统计分析,通过Origin 2025b软件进行图表绘制。

      • 不同铜水平处理下,橡胶苗根系生长的形态响应具有显著的浓度与时间依赖性(图1)。对照组和T1组(pH调控)在整个处理周期(3~12 d)中,根系始终呈现出典型的白色外观。缺铜处理(T2组)在12 d时和T3组在处理9~12 d时能观察到有小部分区域出现褐变;T4组引发了典型的铜毒害症状,仅处理3 d时就能观察到褐化现象,6~9 d的时候褐色逐渐变得更深,到了12 d,出现大面积深黑色病变,并且有根系减少现象,根系组织已经遭受了不可逆的损伤;T5组则出现了急性毒害效应,处理第3~6 d时候就出现较多根系区域出现黑变现象,9~12 d的时候根系几乎完全变黑,同时伴随着根系死亡现象。

        图  1  不同铜处理浓度下橡胶苗根系生长的差异

        Figure 1.  Variation in root growth performance of rubber tree plants under treatment at different copper concentrations

      • 不同铜水平处理下,橡胶苗叶片生长的形态响应具有显著的浓度与时间依赖性(图2),CK与T1组叶片生长表型未发生明显变化。缺铜处理(T2组)表现出典型的缺铜症状,主要表现为叶片黄化,叶尖有干枯现象,在处理12 d时最明显;T3组在处理6~12 d叶片有所黄化,但与T4和T5组相比,程度较轻,T4和T5组明显叶片黄化加剧,并伴随老叶枯萎及锈褐色斑块的形成,其中T5组症状最为严重。

        图  2  不同铜处理浓度下橡胶苗叶片生长的差异

        Figure 2.  Change in leaf growth performance of rubber tree plants under treatment at different copper concentrations.

      • 图3结果显示,从同一质量浓度铜随胁迫时间延长的变化趋势来看,在pH调控处理组(T1)中,根系与叶片游离脯氨酸含量与对照组(CK)基本没有明显差异;缺铜处理组(T2)根系和叶片的游离脯氨酸含量在第12 d时达到峰值,在整个处理期内(3~12 d)分别上升到1.59倍和1.24倍;铜过量处理下,T3组的根系与叶片游离脯氨酸含量呈上升趋势,至第12 d达到峰值分别累计升高到1.65倍和1.54倍;T4和T5组则表现出“快速积累-下降的变化特征,在第9 d,T4组达到峰值后开始明显下降;在第6 d,T5组出现峰值后开始出现显著下降趋势。从同一胁迫时间下不同质量浓度铜处理组间的差异来看,在第6 d的关键响应期,各处理组脯氨酸积累量显著分化,T2-T5根系脯氨酸含量分别是对照组的1.26、1.02、2.35、2.99倍,叶片是对照组的1.08、1.45、2.80、6.01倍。

        图  3  不同铜水平下橡胶苗游离脯氨酸含量差异

        Figure 3.  Differences in free proline content among rubber seedlings under varying copper levels

      • 图4结果显示,在不同质量浓度铜处理下,橡胶树幼苗根部、树皮、木质部及叶片中的铜含量随胁迫时间延长呈现出各自的变化动态。根部在正常(CK)和pH调控(T1)条件下铜含量无明显差异,仅随时间轻微上升;缺铜处理(T2)则导致根部铜含量在处理后期显著下降;而铜过量处理中,T3组铜含量在第6 d显著上升后趋于平稳,T4和T5组则在整个胁迫期内持续上升,表现出明显的时间依赖性。树皮中,CK与T1组铜含量始终无显著变化,T2组后期明显下降,T3组在第12 d显著上升,T4和T5组则从早期开始持续积累。木质部在CK、T1和T2组中变化不显著,而T3-T5组均出现不同程度上升,其中T4和T5组在3~9 d显著上升后趋于稳定。叶片中,CK与T1组铜含量轻微上升,T2组在第6 d下降后稳定,T3组整体无显著变化,T4和T5组分别在第6~12 d和第3~12 d时持续显著上升,表现出持续的铜富集效应。在同一胁迫时间下,不同质量浓度铜处理对各组织铜含量的影响存在显著差异。根部在早期(第3 d)仅T3至T5组铜含量显著高于对照,随时间推移,T4和T5组铜含量持续上升,至第12 d分别达到对照组的6.22倍和11.47倍,而CK、T1与T2组间始终无显著差异。树皮中,T3至T5组从第3 d起铜含量即显著高于对照,且随处理浓度上升而递增,至第12 d分别达对照的6.47倍、9.07倍和9.67倍,CK与T2组在多数时间点无显著差异。木质部中,T3至T5组铜含量始终显著高于对照,而CK、T1和T2组间始终无显著差异。叶片中,T4和T5组铜含量自第3 d起即显著高于对照,且随时间延长差异急剧扩大,至第12 d分别达对照的35.17倍和56.17倍,T3组仅在第6 d略高于对照,其余时间与对照无显著差异。从相同组织在不同处理条件下的铜含量变化中,可观察到相同处理条件下不同组织器官之间的铜含量差异。整体而言,根部是铜积累的主要部位,其铜含量在各处理中普遍高于其他组织;木质部铜含量相对最低,多数时间表现为低积累;叶片和树皮的铜含量介于根部和木质部之间,且在铜过量处理下,叶片铜含量在后期超过树皮,显示出更强的铜积累潜力。这些结果表明,各组织对铜的积累能力存在明显差异,且受外界铜质量浓度和处理时间的共同影响,其中根部表现出极强的铜储存能力,叶片在高铜胁迫下则显示较强的铜积累特性。

        图  4  不同铜处理下橡胶苗各组织铜含量的变化

        Figure 4.  Changes in copper content among various tissues of rubber tree plants under different copper treatments.

      • CK与T1组在整个处理期间(3~12 d)的转运系数未出现显著变化,其值始终维持在1.0左右波动;T2处理组的转运系数在处理第3 d,转运系数为1.28,与对照组无显著差异,至第6 d,其值显著下降至0.90,在第9 d和12 d,转运系数回升至1.05和1.74;T3和T4组在整个处理期间,其转运系数均保持在高位(T3:1.89~2.43;T4:1.67~1.92),且随时间推移未发生显著变化;T5组的时间效应最为显著,在处理前9 d,转运系数维持在极高水平(2.33~2.03),然而,至第12 d,其值出现急剧且显著的下降至1.42。从浓度效应来看,在处理初期(3 d),T3、T4、T5处理的转运系数均显著高于对照组;在第6 d和第9 d,浓度效应模式保持一致,T3-T5组的转运系数始终显著高于对照组;到12 d,浓度效应格局发生了关键变化,T3和T4组的转运系数(2.43,1.89)依然显著高于对照组,最高浓度处理T5的转运系数(1.42)相较于前几个时间点自身大幅降低。

        图  5  不同铜处理浓度下橡胶苗铜转运系数的变化

        Figure 5.  Comparison of copper translocation factor in rubber tree plants under treatment at different copper concentrations.

      • 本研究系统分析了不同铜处理浓度、胁迫时间与pH值处理方式对橡胶树幼苗根系与叶片形态、以及铜在根部、树皮、木质部和叶片中积累的动态影响。结果表明,橡胶树幼苗对铜胁迫的响应具有明显的组织特异性和时间-浓度依赖性,其形态与生理变化揭示了铜吸收、转运及毒害的关键过程。从形态学响应来看,根系和叶片对铜胁迫极为敏感。对照组(CK)及pH调控组(T1)条件下根系保持白色健康状态,叶片未出现明显异常,说明单纯的pH值改变并未引发形态学方面的胁迫,这一结果与多数研究中植物对轻度pH波动具备较强耐受性的结论相吻合[4]

        铜缺乏处理组(T2)在试验后期出现了叶片黄化、叶尖干枯以及根系褐变等典型的缺铜症状,符合植物在铜匮乏时光合受阻和氧化胁迫加剧的典型症状[30]。铜过量处理组(T3-T5)则产生了典型的剂量和时间依赖性毒害症状,特别是T4和T5组的根系从褐变逐渐发展为黑变,甚至出现腐烂现象,这是高浓度铜毒害的直接表现。高浓度的铜能够引发强烈的氧化胁迫,从而导致脂质过氧化、膜系统遭到破坏以及电解质外渗,最终致使细胞死亡和组织坏死[7]。此外,铜离子可能会直接抑制根尖分生组织的活性,破坏细胞分裂和伸长功能,进而导致根系减少[6],叶片黄化加剧以及出现锈褐色斑块,同样是氧化损伤和叶绿体结构被破坏的结果[4],T5组呈现出急性毒害效应,这意味着当环境中的铜质量浓度超出某一临界阈值时,橡胶苗的防御机制将会瓦解。游离脯氨酸作为植物重要的渗透调节物质,通过维持渗透平衡或细胞膨胀来提高植物胁迫耐受性,从而稳定膜结构,有效减少胁迫对植物造成的损害[25],它的积累动态为不同铜处理下橡胶苗的形态响应提供了生理学依据。结果表明,脯氨酸的积累模式与形态损伤的严重程度和发生时间高度一致,在T2和T3组中,脯氨酸的持续积累至第12 d达到峰值,为形态观察到的根系局部褐变和叶片轻度黄化等症状提供了内在依据,说明脯氨酸的合成被有效激活,以应对铜稳态失衡所造成的渗透压和氧化平衡挑,橡胶苗具备一定的耐受与适应能力[31-32]。最具代表性的是T4和T5高铜胁迫组,其脯氨酸呈现“快速积累-下降”的特征性变化,尤其是T5组在第6 d叶片脯氨酸含量急剧升至对照的6.01倍,充分反映了橡胶苗在急性毒害下的强烈生理应激,而峰值后的迅速下降,则从生理层面指示了细胞防御系统的崩溃[33],为橡胶苗根系大面积黑变、组织死亡以及叶片黄化加剧、出现锈斑和枯萎等不可逆损伤的最终定性结论提供了定量支撑。后续研究可将系统整合根系总长、根平均直径、叶面积等定量指标,以更深入地解析铜胁迫对橡胶树生长的影响机制。

        本研究系统揭示了铜胁迫下的橡胶苗铜吸收、积累及转运特性,不同器官的响应特性存在显著差异,并体现出明显的浓度与时间依赖效应。在对照(CK)和pH调控(T1)条件下,根部、树皮、木质部和叶片中的铜含量在整个试验期间基本保持稳定,且组间无显著差异,同时转运系数(TF)维持在1.0左右波动,表明在正常铜供应及一定pH波动范围内,植物体内铜稳态调控机制运行有效,能够维持铜含量的动态平衡[1],而单纯的pH值改变在并未引发不同器官铜含量和铜转运特性的变化[4]。缺铜处理(T2)下,橡胶苗根部与树皮中铜含量在胁迫后期显著下降,叶片中含量也明显降低,表明铜长期缺失情况下橡胶苗启动了资源再分配策略以优先保障关键生理活动;与之相应,T2组的TF在处理第6 d时TF显著降至0.90,说明植物短期内抑制了铜向地上部的转运,以维持根系基本功能;而在第9~12 d,TF回升至1.74,可能与高亲和力铜转运蛋白(如COPT家族)表达上调有关,反映出植物为满足地上部代谢需求而增强铜吸收与转运的长期补偿机制[34]。铜过量处理(T4和T5)显著促进了铜在各组织中的积累,尤以根部和叶片最为明显,且积累程度随胁迫浓度升高和处理时间延长而加剧,T4和T5处理下根部铜含量急剧上升,表明根部是过量铜的主要吸收和富集器官;树皮与木质部中铜含量的持续增加,说明铜过量时可向上运输;特别值得注意的是,T4和T5处理叶片中铜含量至第12 d时达到对照的35.17和56.17倍,揭示出铜已大量迁移至地上部,极可能引发严重的光合毒性及氧化损伤[12],而T4组的转运系数在处理期间一直显著高于对照组,也证实了高铜时铜会向地上部运输,这可能源于根部积累饱和后的被动外排[4],相比之下,T5组TF在前9 d处于极高水平(>2.0),但在第12 d急剧下降至1.42,说明长期高强度胁迫已导致根系转运功能严重受损,作为一种终极保护机制限制了铜向上运输的途径,标志着重度铜胁迫下植物生理功能的崩溃[6]。T3组的结果展现了一种典型的植物重金属“区隔化耐受”(separtitioning tolerance)策略,其根部铜含量在处理第6 d后达到稳定状态,可能是因为根系通过上调植物螯合素(phytochelatins,PCs)合成和液泡区隔化机制,将过量铜离子固定于根部细胞中,从而限制了其向细胞质关键部位的扩散[1];树皮和木质部中铜含量的显著积累,结合持续高于对照组的转运系数,说明铜离子能够向上转移,然而叶片铜含量始终未发生显著变化,这一现象揭示了橡胶苗体内存在保护机制,比如叶片通过调节木质部卸载效率和增强细胞壁固定能力,有效阻止了铜向光合组织的进入[6];这种将重金属限制在非光合器官而保护关键生理功能的策略,体现了橡胶苗在此浓度下维持生长与防御平衡的适应性机制[7]。虽然T3(6 mg·L−1)下橡胶苗出现了根系褐变和叶片黄化表明橡胶苗确实遭受了胁迫,但没有出现像T4和T5(12~24 mg·L−1)那样严重的坏死、黑化和叶片枯萎,说明造成的损伤是轻度的,并没有危及橡胶苗整体生存,因此,6 mg·L−1在本试验条件符合耐受阈值特征,而高于12~24 mg·L−1则导致铜向上运输失控,叶片铜含量急剧升高,造成不可逆的氧化损伤和组织坏死。综上,随着铜质量浓度的增加和胁迫时间的延长,橡胶苗根部铜含量显著增高且向地上部运输,尽管本研究对象为幼苗,尚未形成产胶的乳管系统,但根据转运趋势推测,在成龄橡胶树中,长期高浓度施用铜制剂可能导致胶乳中铜含量升高,后续研究可拓展至成龄树及胶乳中铜的积累动态加以验证,本次研究结果可为该方向提供基础数据支撑。并且,本研究首要目标是建立铜胁迫对橡胶树幼苗影响的基础数据库,明确单一主栽品种的响应规律是后续开展比较研究的前提。当然,未来若能引入对铜敏感性存在差异的不同种质资源进行对比研究,将能更深刻地揭示橡胶树种的铜耐受与排斥机制,为品种选育提供更为全面的理论依据。基于本研究结果,生产环境中高浓度的铜是可以通过根部吸收后向橡胶树地上部分运输的,土壤中过高浓度的铜可能会造成橡胶树胶乳中铜含量的升高影响胶乳质量,并有可能对橡胶树生长造成伤害。在长期使用硫酸铜的橡胶园、土壤酸化严重地区及土壤母质中铜含量高的地区,应定期监测土壤有效铜含量,防范性铜累积风险;在橡胶生产中的应加强铜营养的监测管理;在硫酸铜刺激剂使用中,必须严格将施用浓度控制在安全范围内,可以先通过小范围试验确定最佳用量,避免因盲目追求短期产量而导致铜在树体内累积;在幼苗培育阶段可将铜耐受性纳入品种选育指标,筛选培育具有较强铜排除或耐受能力的优良品种。

      • 铜胁迫对橡胶苗的影响呈现浓度与时间依赖性,长期缺铜(0 mg·L−1)诱发典型缺素症状(叶片黄化、根系褐变),短期缺铜抑制了铜向地上部的转运,以维持根系基本功能后向地上部转运满足代谢需求而增强铜吸收与转运的长期补偿机制;高质量浓度处理下(12~24 mg·L−1)可引发根系黑变、叶片锈斑甚至死亡。根部作为初始屏障,通过固持大量铜来试图保护地上部,但随着胁迫的持续和强度的增加,根部的保护机制被突破,导致铜向地上部(尤其是叶片)的大量运输,研究确定0.1~6 mg·L−1可为本试验条件下橡胶树幼苗的铜耐受浓度。

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