Isolation, cultivation and antibacterial activity of actinomycetes from the sediments in the deep-sea cold seeps of South China Sea

沉积物样品由中国科学院深海科学与工程研究所“探索一号”科考船搭载的“深海勇士”号载人潜水器于2021年2月采集于南海海马冷泉区。样品采集后，放置4 ℃冰箱冷藏。巡航结束后，所有样品放在冰上运送到实验室，放置4 ℃保存备用。样品分为3组HM2、HM3、HM6（表1）。

抗菌活性检测采用7种供试菌，即H119（粪肠球菌Enterococcus faecalis）、H57（甲氧西林耐药金黄色葡萄球菌methicillin-resistant Staphylococcus aureus, MRSA）、G280（甲氧西林敏感金黄色葡萄球菌methicillin-susceptible Staphylococcus aureus, MSSA）、H442（亚胺培南敏感鲍曼不动杆菌imipenem-susceptible Acinetobacter baumannii）、E292（亚胺培南耐药鲍曼不动杆菌imipenem-resistant Acinetobacter baumannii）、G1（高地芽孢杆菌Bacillus altitudinis）、F1（副溶血性弧菌Vibrio parahaemolyticus）。菌株分离、发酵、抑菌活性测试使用相应的培养基（表2）。

在无菌条件下，称取0.1 g深海沉积物样品，加入1 mL无菌海水，振荡10 min，随后将沉积物悬浊液梯度稀释10⁻¹到10⁻⁶，稀释倍数为10⁻⁶悬浊液100 μL于培养基中涂布，28 ℃倒置培养，每隔24 h观察菌落生长状况，待形成菌落后，挑取部分菌，采用三区划线法接种到分离培养基，重复纯化培养多次直至得到单一纯化菌株。随后用含25%甘油液体培养基冻存（−80 ℃）保种。

利用试剂盒提取DNA（TIANamp Bacteria DNA Kit），以16S rDNA序列通用引物27F/1492R^[24]、Taq酶体系对其进行PCR扩增。对PCR产物验证通过后测序（擎科生物公司）。测序结果拼接完成后，上传EZbiocloud在线数据库（https://www.ezbiocloud.net）进行对比分析，获得菌株的分类信息。以近缘菌株的16S rRNA基因序列作为参比对象，采用MEGA软件neighbor-joining构建系统发育树。

在2216E琼脂培养基上采用平板划线法培养菌株形成菌落，挑取单菌落，接种至5 mL发酵培养基中培养（28 ℃，180 r·min⁻¹）3 d，获得种子菌液。随后，按照发酵培养基∶种子液（v∶v）= 100∶5的比例进行发酵培养（28 ℃，180 r·min⁻¹）7 d，发酵液总体积为105 mL。发酵完成后，取乙酸乙酯与发酵液等体积充分混合，萃取3次，有机相合并后经旋转蒸发仪浓缩获得粗提物，−20℃保存备用。

采用K-B纸片扩散法药敏试验^[25]检测放线菌发酵粗提物对7种供试菌的抑菌活性。用甲醇（分析纯）配制待测粗提物溶液（10 g·L⁻¹），分2次滴加到灭菌滤纸片（直径6 mm）上，每次滴加5 μL，将风干的滤纸片贴在涂布了供试菌的固体培养基上（供试菌稀释至10⁻³涂布），采用万古霉素以及氯霉素（1 g·L⁻¹）为阳性对照，甲醇溶液为空白对照，37 ℃培养24 h。通过与阳性对照的抑菌圈直径对比，判断粗提物的抑菌活性。

实验从HM2、HM3、HM6三组沉积样中分离出50株放线菌，从HM3样品组中分离的放线菌最多，共26株，其次是HM6样品组，19株，HM2样品组的最少，只有5株（图1）。这50株放线菌都属稀有类型，形态类似于细菌，无气生菌丝，隶属于7个属（图2），其中类诺卡式菌属（Nocardioides）22株、迪茨氏菌属（Dietzia）13株、乔治菌属（Georgenia）6株、考克氏菌属（Kocuria）4株、节杆菌属（Arthrobacter）2株、小单孢菌属（Micromonospora）2株、印度洋金色丸菌属（Chryseoglobus）1株。各放线菌属间的相对丰富度呈现一定差异，其中类诺卡氏菌属在3组样品中属于优势菌。采用2216E培养基、R2A琼脂培养基和ISP3琼脂培养基分别筛选到18、29和3株放线菌，R2A培养基更适合用于筛选深海放线菌。基于对潜在新菌种的界定^[26-28]，在这50株放线菌中，有6株与近缘菌株16S rRNA基因的相似度低于98.7%，初步判断为潜在新种（表3）。

通过对50株放线菌的发酵液粗提物进行抑菌活性分析，发现7株放线菌的粗提物对3种供试菌显示出不同程度的抑菌作用，抑制活性比例为14%。其中，5株菌对F1有抑菌活性，4株对G280有活性，2株对H57有活性。编号为 LDBS2366和LDBS2469的菌株粗提物仅对 G280 有抑菌活性。 LDBS3832、 LDBS3950和 LDBS3974对F1有轻微抑菌活性，此外LDBS3974 对H57也有轻微抑菌活性。LDBS3949的菌株粗提物对H57、G280、F1均有抑菌活性。LDBS3988的菌株粗提物对G280和F1有抑菌活性。50株放线菌粗提物对H119、H422、E292、G1均没有活性。小单孢菌属的抑菌活性及抑菌范围都优于类诺卡式菌属（表4）。其中，小单孢菌属的菌株LDBS3949和LDBS3988呈现出良好的抑菌效果。

从南海海马冷泉区的三组沉积物样品中分离到50株放线菌，属于5个科，7个属，其中类诺卡式菌属、迪茨氏菌属是优势菌，后者为海洋特有。这与从南大西洋深海沉积物分离出的36株放线菌不同，属于6个科，8个属，其中微球菌属、迪茨氏菌属和微杆菌属是优势菌^[29]，也有实验分离出132株放线菌，属于13个科，19个属，其中考克氏菌属、短杆菌属和链霉菌属是优势菌^[30]。在这些沉积样品中，共有种属的放线菌有迪茨氏菌属、考克氏菌属、微球菌属、微杆菌属。不同沉积样品的放线菌种属存在着差异，这可能一方面是源自地域环境差异，另一方面是因不同的培养条件和分离方法造成的。基于对潜在新种的界定，本研究分离的放线菌中有6株的相似性低于98.7%初步认为是潜在新种，它们属于迪茨氏菌属、类诺卡式菌属、小单孢菌属。有研究发现Nocardioides sp. strain CF18利用单加氧酶（pBMO）在丁烷上生长，而pBMO与甲烷氧化细菌的甲烷单加氧酶（pMMO）基因序列相似^[31]，推测这些酶助力于类诺卡式菌属菌株在含大量甲烷环境的冷泉中能生存并成为优势属。

本研究中发现诺卡式菌属和小单孢菌属的发酵液粗提物都呈现出较好的抗菌活性，其中，小单孢菌属的LDBS3988和LDBS3949菌株对G⁺ 菌MRSA、MSSA，以及G⁻ 菌V. parahaemolyticus都表现出抑制作用。Zhang等^[32]曾从南海沉积物来源的小单孢菌属的次级代谢产物中分离到3个新化合物fluostatins I−K，小单孢菌属的次级代谢产物对金黄色葡萄球菌具有较好的抑制作用。除了能产多种化合物的小单孢菌属外，本研究分离到的类诺卡式菌属对MRSA、MSSA、V. parahaemolyticus也呈现出一定的抗菌活性，这是首次报道深海来源类诺卡式菌属有抑菌活性。尤其是小单孢菌属的2株菌LDBS3988和LDBS3949的发酵粗提物呈现较强的抑菌活性，具有较好的深入研究价值。

目前对南海冷泉沉积样品中硫化细菌的研究较多^[33]，但对放线菌的研究还较少。本研究揭示了冷泉区丰富的放线菌资源，这些具有活性的菌株可作为挖掘深海放线菌抗菌天然产物的重要资源。后期研究将通过优化培养条件、发酵条件、激活沉默次级代谢合成途径等手段进一步挖掘新颖活性化合物，为从深海极端环境中寻找新型抗生素提供参考资料。