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近年来,由于人类活动频繁,二氧化碳排放量居高不下导致全球气候变暖和环境污染,这两大诱因导致海洋中低氧现象频发[1]。低氧通常是指水中溶解氧浓度低于2 mg·L−1[2]。凡纳滨对虾具有抗逆性强、生长快、繁殖期长、对养殖条件要求低、便于运输等优点,成为世界对虾养殖的三大品种之一[3]。水体中的溶解氧是影响凡纳滨对虾生长发育的重要因素。目前对甲壳类动物应激的研究主要集中在其对行为、代谢、免疫等方面。甲壳动物对低氧胁迫的分子调控机制主要是通过在HIF-1信号通路、AMPK信号通路及细胞凋亡信号通路上发挥作用[4]。HIF-1作为参与低氧反应的重要转录调节因子,是由HIF-1α和HIF-1β两个亚基组成的,但 HIF-1α亚基在常氧状态下表达受到抑制,只有在生物体处于低氧环境中,HIF-1α才被激活;该亚基与β亚基共同调控低氧应答部分基因的转录[5]。目前的研究成果主要是围绕HIF-1α参与调节低氧条件下凡纳滨对虾葡萄糖代谢途径中一些基因的表达及其相应的生理响应和抗病毒能力[6-13]。
无脊椎动物缺乏特异性免疫系统,只能依靠血淋巴这一非特异性免疫实现[14]。血淋巴中的血细胞和各种免疫因子在体内共同发挥免疫作用;其中血细胞在吞噬、包囊和结节形成等方面均发挥重要作用[15];血蓝蛋白(Hemocyanin,HC)是节肢动物中重要的呼吸蛋白,还在酚氧化酶和抗菌抗病毒等方面发挥免疫作用[16]。在血细胞中,有许多基因调控血细胞的增殖稳态和免疫,造血激素(Astakine,AST)通过降低细胞外TGase活性从而刺激了血细胞的释放,在甲壳动物中造血的重要性已被证实[17];血细胞稳态相关蛋白( Hemocyte homeostasis-associated protein ,HHAP)在维持血细胞稳态中发挥重要作用,该基因表达降低会导致血细胞数减少[18];铁蛋白(Ferritin,FT)作为一种铁清除蛋白,可以通过抑制铁含量从而抑制细菌生长,最终阻碍病原体的存活[17]。在虾类血清中,酸性磷酸酶(Acid phosphatase,ACP )和碱性磷酸酶(Alkaline phosphatase,AKP)是甲壳动物体内吞噬溶酶体的重要组成部分,能促进血细胞的吞噬和包裹;酚氧化酶(Phenoloxidase,PO)活化后可快速吸附在体外异物上,从而进行识别和调节 ,对于血细胞的吞噬和包裹及识别消灭体外异物发挥积极作用[19]。然而,在低氧条件下HIF-1α对凡纳滨对虾的免疫性能的影响尚不清楚,且血细胞作为无脊椎动物重要的免疫系统,特别是在低氧胁迫条件下,凡纳滨对虾血淋巴中HIF-1α对各项免疫指标的影响有待深入研究[20]。因此,本研究着重探讨了HIF-1α在低氧胁迫下对凡纳滨对虾血淋巴在免疫反应中的影响,旨在为凡纳滨对虾的免疫性能研究及其健康养殖提供一定的理论依据。
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凡纳滨对虾( L. vannamei) 于2022年3月份取自海南省东方市海南中正水产科技有限公司,选择质量为(13.0 ± 2.0)g的健康对虾作为实验对虾。实验前,在100 L的水族箱中驯养7 d,水体盐度、温度和pH分别为(35.0 ± 1.0)‰、(25.0 ± 0.5)℃和 7.9 ± 0.2,水体溶氧浓度为(6.5 ± 0.5) mg·L−1。驯养结束后,在水族箱中随机挑选72尾凡纳滨对虾进行后续实验。
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试剂:TRIzol™ 试剂购自赛默飞世尔科技(中国)有限公司;PrimeSTAR® HS DNA Polymerase、TB Green® Premix Ex Taq™ II(Tli RNaseH Plus)、PrimeScript™ 1st Strand cDNA Synthesis Kit、PrimeScript™ RT reagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)、in vitro Transcription T7 Kit(for siRNA Synthesis)均购自宝生物工程(大连)有限公司。SanPrep 柱式 DNA 胶回收试剂盒、PBS购自生工生物工程(上海)股份有限公司;酶活试剂盒购自南京建成生物工程研究所有限公司。仪器:高通量组织研磨器(Scientz-48),低温离心机(Eppendorf),微量分光光度计(Thermo nanodrop 2000),PCR仪(Bio-rad T100),电泳仪(Bio-rad),凝胶成像分析系统(Bio-rad Gel Doc XR+),荧光定量PCR仪(Analytik-qTOEWER3),恒温水浴锅,溶氧仪( HANNA,HI 9146),pH 计( HANNA,HI 8424),盐度计,温度计,氮气罐。
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本实验的qRT-PCR引物(表1)通过primer5.0设计,并全部由合成生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
引物名称 引物序列(5′-3′) 用途 GenBank HIF-1α-F GGAGAGCGAGATCTTCACG HIF-1α cDNA扩增 FJ807918 HIF-1α-R CTCGATGTTGGACGGGTG HIF-1α cDNA扩增 T7HIF-1α-F GATCACTAATACGACTCACTATAGG
GGGAGAGCGAGATCTTCACG含有T7 Promoter序列的HIF-1α cDNA扩增 FJ807918 T7HIF-1α-R GATCACTAATACGACTCACTATA
GGGCTCGATGTTGGACGGGTG含有T7 Promoter序列的HIF-1α cDNA扩增 rtHIF-1α-F GACTTGACCCACTTGGCTCC qRT-PCR目的基因扩增 FJ807918 rtHIF-1α-R CCTGCTGCTAAGACGCTTC qRT-PCR目的基因扩增 AST-F GCCGTGTCCAGTGCAGTCAGAA qRT-PCR目的基因扩增 HM594944 AST-R TTCATGATGCGACACCAGTCCC qRT-PCR目的基因扩增 HHAP-F CGTACCAAGGCAACAGAAGAACCTG qRT-PCR目的基因扩增 KP676891 HHAP-R CGGATCTCCTTCTTTGGCTCCTC qRT-PCR目的基因扩增 AY955373 FT-F CCACAGAATTTGGATGGAAG qRT-PCR目的基因扩增 FT-R ATGATTACCAAGCTGAAGCG qRT-PCR目的基因扩增 L8-F GTCTACTGCGGCAAGAAGGC qRT-PCR内参基因扩增 DQ316258 L8-R CCTGAAGGGAGCTTTACACG qRT-PCR内参基因扩增 -
利用T7 RNA Polymerase进行体外转录,以含有T7 Promoter序列的HIF-1α双链DNA为模板,可以对Promoter下游的DNA序列进行转录,高效合成单链RNA。并按照说明书通过 DNase I 降解 DNA 模板和纯化转录RNA。使用 NanoDrop 微量分光光度计和 1% 琼脂糖凝胶电泳确认dsRNA 的纯度和浓度,并将一部分送去生工生物工程(上海)股份有限公司测序验证片段的正确性,剩余纯化 dsRNA储存在 −20 ℃备用。用于体外转录的PCR 片段来源于文献[8],1个 580 bp 片段对应于编码序列的位置 243~822,GenBank 登录号 FJ807918。
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将合成的dsRNA溶于1×PBS,每100 μL PBS中含有13 μg dsRNA。将制备好的dsRNA溶液注射至凡纳滨对虾腹部肌肉,保证1 g虾注射1 μg dsRNA,为干扰组;将注射100 μL 1×PBS的凡纳滨对虾作为对照组。注射后,为了使dsRNA充分发挥作用,且尽可能让对虾消除注射应激效应,将2组对虾放回常氧水体中观察24 h,再进行常氧组的血淋巴采集。实验设置常氧组[(6.5 ± 0.5) mg·L−1]和低氧组[(2.0 ± 0.5 )mg·L−1],每组设置3个重复。低氧胁迫实验开始时,先向缸中通入大量氮气来实现急性低氧,待溶氧浓度到达2.0 mg·L−1时,减少氮气的输入量,再通过调节水体中充入氮气和空气的比例维持溶氧浓度,并且每隔30 min使用HANNA溶氧仪监测溶解氧浓度。低氧胁迫实验持续12 h,分别在3、6、12 h进行低氧组血淋巴的采集,用提前加入抗凝剂(30 mmol·L−1柠檬酸三钠,0.34 mol·L−1氯化钠,10 mmol·L−1 EDTA,0.115 mol·L−1葡萄糖)的注射器从虾围心腔中采集血淋巴样品,置于冰上备用,每组采集3尾实验虾。
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血细胞计数使用血球计数板,在血球计数板的计数室中加10 μL的血淋巴,然后用光学显微镜进行观察计数。将血淋巴在4℃,352 r·min−1条件下离心10 min,取100 μL上清液并添加2 900 μL缓冲液(50 mmol·L−1 Tris)。用紫外分光光度计(1 cm光通)在335 nm处测定其OD值,根据公式E335 nm( g·L−1)= 2. 3×OD 值(式中, E335 nm为血蓝蛋白浓度,2. 3 为消光系数)计算血蓝蛋白浓度。
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向1.6实验中血淋巴离心后的沉淀中加入Trizol试剂提取凡纳滨对虾血细胞的总RNA,并按说明书用反转录试剂盒制备 cDNA。实时荧光定量 PCR 扩增体系:TB Green Premix Ex Taq II(Tli RNaseH Plus)(2×) 10.0 μL, 上、下游引物(10 μmol·L−1 )各0.8 μL,cDNA模板1.0 μL,灭菌水7.4 μL,总体系共20.0 μL。PCR扩增程序:95 ℃,30 s; 40个(95 ℃, 5 s; 60 ℃,30 s)循环;绘制融解曲线。选择L8作为内参基因,基因表达水平采用 2 −ΔΔCt 法进行计算[21]。
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ACP、AKP、PO酶活的测定均采用南京建成生物工程研究所生产的试剂盒进行测定,具体操作按其说明书进行。
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用 SPSS Statistics 23 软件进行方差分析,并利用 GraphPad Prism 9.0 软件作图。
Effects of HIF-1α on the immune response of the hemolymph of Litopenaeus vannamei under hypoxic stress
doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.20220084
- Received Date: 2022-10-18
- Accepted Date: 2023-03-28
- Rev Recd Date: 2023-04-21
- Available Online: 2023-08-26
- Publish Date: 2023-11-24
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Key words:
- Litopenaeus vannamei /
- HIF-1α /
- gene /
- enzyme activity /
- hemolymph
Abstract: In order to investigate the effects of hypoxic-induced-factor-1α (HIF-1α) on the immune response of the hemolymph of Litopenaeus vannamei under hypoxia stress, dsRNA was injected into L. vannamei to interfere with the expression of HIF-1α gene under the hypoxic stress (2.0 mg·L−1) to analyze the regulation effect of hypoxic stress on HIF-1α gene expression level in the hemocyte of L. vannamei. Immune indicators such as hemocyte counts, hemocyanin concentration, gene expression level, enzymatic activity, etc were determined. The results showed that the expression level of HIF-1α in the RNA interference group decreased by 80.1% compared with the control group. The hemocyte counts were significantly lower under hypoxic conditions in the interference group compared with the control group (P < 0.05). Additionally, the concentration of hemocyanin was significantly higher in the interference group than in the control group (P < 0.05). The expression levels of Astakine (AST) and hemocyte homeostasis-associated protein (HHAP) in the hemocytes were significantly higher in the RNA interference group under hypoxic conditions than in the control group, while the expression levels of Ferritin (FT) in the hemocytes were not significantly different between both the interference and control groups. The enzymatic activities of ACP, AKP and PO in the serum in the RNA interference group under hypoxic conditions were reduced to different degrees. By interfering with the expression of HIF-1α gene, it was found that HIF-1α gene played an important role in hemocyte counts, hemocyanin concentration, expression of immune-related genes and the activity of immune-related enzymes in L. vannamen.
Citation: | XUE Yijia, BAI Xue, FU Ying, ZHOU Hailong. Effects of HIF-1α on the immune response of the hemolymph of Litopenaeus vannamei under hypoxic stress[J]. Journal of Tropical Biology, 2023, 14(6): 681-687. doi: 10.15886/j.cnki.rdswxb.20220084 |